技术领域
本发明属于微生物技术领域,具体涉及一株提高水产品肝素提取率的贝雷斯芽孢杆菌(
背景技术
肝素是由葡萄糖胺、L-艾杜糖醛苷、N-乙酰葡萄糖胺和D-葡萄糖醛酸等交替组成的一种酸性粘多糖,具有较高含量的硫酸基,是已知负电荷密度最高的生物大分子,具有良好的抗凝血作用,是临床使用最广泛的抗凝血剂。近年来,有研究还发现肝素具有降血脂、抗炎、抗动脉粥样硬化、抗肿瘤、抑制细菌黏附等作用,是重要的粘多糖类生化药物之一。
一般而言,肝素来源于猪、牛、羊的小肠黏膜提取物,也存在于动物的血管壁和肺之中,但由于受到肝素污染事件、疯牛病和宗教信仰的影响,陆地哺乳动物源肝素的开发受到限制,有学者提出从相对洁净的海洋生物中寻找肝素新资源以替代陆地动物原料。海洋占地球表面积的71%以上,庞大的生物库及其独特的环境,造就了其丰富的生物资源。近年来,从海洋生物中寻找肝素来源的替代原料的研究日益增多,已有报道从海湾扇贝、多种海藻和海洋细菌、虾、红树林蟹、金枪鱼、青口和文蛤等多种海洋生物中提取得到肝素。
酶解法是提取肝素常用的方法之一。蛋白酶能够破坏肝素与蛋白质共价结合的糖肽键,从而将肝素从肝素-蛋白复合物中分离出来,也可将杂蛋白分解为小分子肽。最后通过调节pH,热变性和盐析除去酶蛋白和被降解的蛋白质制得肝素/类肝素。
例如,专利CN201710419627.4公开了一种复合酶提取肝素的方法,通过使用碱性蛋白酶和胰蛋白酶的复合酶进行酶解提取肝素,并将提取液浓缩过滤后,使用树脂进行吸附,然后洗脱沉淀,干燥得到肝素钠粗品,再将所制得的肝素钠粗品经进一步精制后,得到高纯度的肝素钠产品,该方法从猪小肠粘膜中提取肝素,能够提高酶解效率,同时提高肝素钠粗品的产率。还有,专利CN200910071972.9公开了一种肝素的提取、分离、纯化方法,通过蛋白酶水解法、超声波辅助盐析法、离子交换树脂吸附法从猪小肠粘膜中分离和纯化肝素,该方法的肝素提取率达到了230.81mg/kg,比传统方法提高了40%。另有,专利CN201811378238.2公开了一种贝类肝素及其制备方法,其采用胰蛋白酶和木瓜蛋白酶,通过酶解法从贝类中提取获得肝素。
需要指出的是,不论是猪小肠粘膜还是贝类,都含有一定量的与蛋白质结合在一起的脂肪,上述方法均难以实现脂肪与蛋白质的彻底分离。而现有的酶解法提取肝素只关注蛋白的酶解,忽略了脂肪的酶解。这些脂肪的存在阻止了蛋白酶对蛋白的深度酶解,从而使得蛋白酶解的不彻底,影响了类肝素的提取率。现有技术中也未见报道能够解决此问题的方法,因此本专利发明人针对该问题进行深入的试验研究具有重要的现实意义。
发明内容
本发明的目的在于解决采用现有技术无法实现蛋白与脂肪的分离,造成现有酶解法制备肝素提取率较低、成本较高的问题。
基于本发明的上述意图,本专利的发明人筛选出一种可以实现降解脂肪与蛋白的芽孢杆菌菌株,通过生物形态和分子鉴定,所述芽孢杆菌菌株为贝雷斯芽孢杆菌(
本专利的发明人证实,贝雷斯芽孢杆菌(
具体地,本专利给出了将所述贝雷斯芽孢杆菌(
进一步地,采用发酵法制备所述肝素的方法包括:培养所述菌种,得到种子液;向贝类肉浆中接种所述种子液;培养,加入葡萄糖继续培养发酵;发酵结束后,灭酶,得到制备所述肝素的原料。
更进一步地,采用发酵法制备所述肝素的方法包括:将所述菌株接种于LB液体培养基中,于15℃、150r/min培养24h,得到种子液;收集所述种子液中的菌体,向贝类肉浆液中接种所述菌体,所述种子液与贝类肉浆液的体积比为5~15%;15℃、150r/min培养4~12h,加入葡萄糖继续培养发酵30~40h,葡萄糖的加入量为贝类肉浆液质量的0.2~5%;发酵结束后,沸水浴灭酶10min,冷却后离心,取上清液作为所述肝素提取和纯化的原料。
本发明的贝雷斯芽孢杆菌(
鉴定所述贝雷斯芽孢杆菌(
本专利的发明人进一步揭示,贝雷斯芽孢杆菌(
与现有技术相比,本发明具有的有益效果或优点包括:
1)本发明分离鉴定了一种贝雷斯芽孢杆菌(
2)贝雷斯芽孢杆菌(
3)水产品中含有一定量的脂肪,这些脂肪与蛋白质结合在一起。脂肪的有效去除,便于后续分离纯化肝素;
4)贝雷斯芽孢杆菌(
附图说明
图1为贝雷斯芽孢杆菌(
具体实施方式
下面,结合实施例对本发明的技术方案进行说明,但是,本发明并不限于下述的实施例。
实施例1
本实施例提供了所述贝雷斯芽孢杆菌(
具体地,一种贝雷斯芽孢杆菌(
(1)称取10g土壤样品放入250mL锥形瓶中,加入90mL无菌水,振摇混匀并在电炉上煮沸5min,取1mL于50mL富集培养基中,15℃、160r/min恒温振荡培养3天。所述富集培养基的组分包含三丁酸甘油酯、硫酸铵和蒸馏水。作为本发明优选的一种实施方式,50mL富集培养基包括三丁酸甘油酯100uL,硫酸铵0.5g,蒸馏水50mL,经121℃灭菌20min后使用。
(2)取富集之后的培养基按10倍稀释法进行稀释。取1mL富集之后的培养基到装有9mL无菌水的试管中进行稀释,分别稀释至10
所述三丁酸甘油酯平板制备方法为:取三丁酸甘油酯2mL、蛋白胨10g、酵母粉5g、NaCl10g、琼脂20g、蒸馏水1000mL充分混匀,在121℃下灭菌20min。
(3)以水解圈直径和菌落直径比值为依据,挑取比值较大的菌落用平板划线法接种于营养琼脂平板,于15℃培养2天,挑取单菌落接种到营养琼脂斜面,于15℃培养箱中培养2天,再放到4℃冰箱内保存。
(4)将初筛得到的菌株进行产蛋白酶筛选,即将平板初筛挑选出来的菌株用已灭菌的牙签接种于脱脂牛奶平板,做好标记,分别于15℃培养箱中培养48h,观察菌体周围水解圈的大小,综合评价菌株水解三丁酸甘油酯与脱脂奶粉的能力,筛选出菌株HL-5。
具体地,本实施例提供了菌株HL-5的鉴定方法。该菌株的鉴定利用27F和1492R细菌通用引物作为正反向引物,利用MightyAmp DNA Polymerase进行细菌菌落聚合酶链式反应(polymerase chain reaction,PCR)扩增。
PCR扩增体系:27F1.5μL,1492R1.5μL,MightyAmp DNA Polymerase 1.5μL,2×MightyAmp Buffer 30μL,ddH
PCR反应条件:98℃(预变性)2min,98℃(变性)10s,55℃(复性)15s,68℃(延伸)90s,72℃延伸10min,从变性到第一次延伸这个过程循环40次。
将PCR产物送至生工生物工程(上海)股份有限公司测序。将测序结果,通过NCBI进行16S rDNA数据库BLAST检索,该菌株与菌株
由图1结果可知,菌株HL-5在系统发育树上与
本实施例中所述的营养琼脂平板和营养琼脂斜面培养基为采用现有技术配制,本发明并不做限定。需要说明的是,本实施例所述的富集培养基和三丁酸甘油酯平板是一种优选的实施方式,并不是对所述贝雷斯芽孢杆菌(
实施例2
本实施例给出了贝雷斯芽孢杆菌(
(1)现有技术酶解法
将新鲜的菲律宾蛤蜊、贵妃蚌、海湾扇贝、象拔蚌、毛蚶、沙白贝、蛏子和钝缀锦蛤等贝类进行清洗,去壳后取全肉,加入蒸馏水(料液比为1:3),置于高速组织捣碎机中匀浆。匀浆液在恒温水浴锅中55℃自溶5h,先后加入0.5%的2709碱性蛋白酶和木瓜蛋白酶进行酶解。酶解条件为:pH8,50℃,10h。
酶解液经灭酶冷却后离心,取上清液加入0.4倍体积的乙醇,醇沉24h,用蒸馏水对沉淀进行复溶,离心除去不溶物。取上清液加入Sevag试剂(V氯仿:V正丁醇=4:1)进行脱蛋白,离心,取上清液透析48h。样液浓缩后进行冷冻干燥处理,最终得8种贝类肝素粗品,并称量每种肝素粗品的质量。
(2)本发明发酵法
将斜面保藏的(
将新鲜的菲律宾蛤蜊、贵妃蚌、海湾扇贝、象拔蚌、毛蚶、沙白贝、蛏子和钝缀锦蛤等贝类进行清洗,去壳后取全肉,加入无菌水(料液比为1:3),置于高速组织捣碎机中匀浆。
取匀浆液100mL加入到灭菌冷却后的三角瓶中;取(
发酵结束后沸水浴灭酶10min,冷却后离心(8000r/min、20min),取上清液。上清液加入0.4倍体积的乙醇,醇沉24h,用蒸馏水对沉淀进行复溶,离心除去不溶物。取上清液加入Sevag试剂(V氯仿:V正丁醇=4:1)进行脱蛋白,离心,取上清液透析48h。样液浓缩后进行冷冻干燥处理,最终得8种贝类肝素粗品,并称量每种肝素粗品的质量。
将以上通过酶解与发酵方法制备的各类贝类肝素粗品溶解于水中。采用亚甲基蓝法测定肝素含量,以肝素钠为标准品,测定各种贝类肝素粗品中肝素含量,并计算各种贝类肝素的提取率。酶解法与发酵法提取的几种贝类肝素的提取率如表1所示。
表1,酶法与发酵法提取贝类肝素的提取率比对结果
由表1可知,相对于酶解法而言,采用(
如上所述,即可较好地实现本发明,上述的实施例仅仅是对本发明的优选实施方式进行描述,并非对本发明的范围进行限定,在不脱离本发明设计精神的前提下,本领域普通技术人员对本发明的技术方案做出的各种改变和改进,均应落入本发明确定的保护范围内。
机译: 多相正弦贝雷德巴雷频率的产生方法,用于执行该程序的装置以及该方法在控制馈电斯特里希特斯异步电机中的应用
机译: 用于化妆品和药物制剂的粉状和乳状无水贝纳茨巴雷无水产品形式的水,以及改善粉状或克雷祖贝雷通根中贝纳宗正子的原料的方法
机译: 姿态确定装置,基于姿态确定的贝德斯预防装置,姿态确定方法和基于姿态确定的贝德斯雷预防方法