烟酰胺单核苷酸及其在抗肿瘤药物心肌损伤中的保护应用

摘要

本发明属于防治化疗药心脏毒性的药物技术领域，具体涉及烟酰胺单核苷酸及其在抗肿瘤药物心肌损伤中的保护应用。烟酰胺单核苷酸在人体内通过转化为NAD+来发挥其生理功能,如激活NAD+底物依赖性酶Sirtuins(组蛋白脱乙酰酶,又称沉默调节蛋白)、调节细胞存活和死亡、维持氧化还原状态。NMN作为右雷佐生(Dex)的替代品，对阿霉素(Dox)等蒽环类化疗药引发的心肌损伤产生保护作用，减轻Dox治疗肿瘤的副作用。

说明书

技术领域

本发明属于防治化疗药心脏毒性的药物技术领域，具体涉及烟酰胺单核苷酸及其在抗肿瘤药物心肌损伤中的保护应用。

背景技术

随着癌症发病率日趋上升，包括蒽环类化疗药在内的抗肿瘤药物用药周期以及累积用量不断增加，化疗药物的不良反应越加凸显，其中以心肌损伤带来的危害最受关注，因而就化疗药物的心肌损伤新临床需求以及学科趋势，近年来全球肿瘤心脏病这一新学科得以迅速发展。其宗旨是在确保化疗药物抗肿瘤作用的同时，如何评估、预防、治疗化疗药带来的心血管不良反应。

目前，蒽环类化疗药物在乳腺癌、淋巴瘤、头颈部肿瘤、多发性骨髓瘤等肿瘤的化疗中依然具有基石性价值。临床常用的蒽环类药物如多柔比星(阿霉素)、柔红霉素、阿克拉霉素、伊达比星、表柔比星等，其化学结构均含有如下的1个四环发色团，不同之处只是四环发色团上的取代基变化而已。其中，最经典且具代表性的药物是多柔比星(阿霉素)。

尽管蒽环类化疗药物不断推陈出新，如表柔比星、吡柔比星、柔红霉素、阿克拉霉素、伊达比星等，但心脏毒性仍然是蒽环类药物具有共性的不良反应，如多柔比星、表柔比星引起化疗性心衰的最低累积剂量分别为：500mg/m

右雷佐生是目前被纳入临床指南用于治疗蒽环类药物心肌损伤的唯一药物，价格昂贵、给药剂量大(建议剂量为阿霉素的5～10倍)，且易加重骨髓抑制，临床对于用药控制较为严格。因此，研发新一代心肌损伤保护性药物非常重要。

烟酰胺单核苷酸(NMN)是细胞氧化型烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NAD

发明内容

本发明提供了烟酰胺单核苷酸作为蒽环类抗肿瘤药物心肌损伤的保护性药物的应用。烟酰胺单核苷酸在人体内通过转化为NAD

本发明是采用以下的技术方案实现的：

本发明提供了烟酰胺单核苷酸在抗肿瘤药物心肌损伤中的保护应用。

本发明还提供了烟酰胺单核苷酸在蒽环类抗肿瘤药心肌毒性预防和/或治疗中的应用。

具体的，所述抗肿瘤药包括阿霉素、柔红霉素、阿克拉霉素、伊达比星、表柔比星或米托蒽醌中的至少一种。

进一步地，作为本发明的一个优选方案，用于制备抑制抗肿瘤药所致的心肌损伤的药物、药物混合物、药物组合物。

进一步地，作为本发明的一个优选方案，所述药物、药物混合物或药物组合物中，包括烟酰胺单核苷酸。

本发明还提供一种药物、药物混合物或药物组合物，其活性成分包括烟酰胺单核苷酸，所述药物、药物混合物或药物组合物具有下述1)-5)中至少一种功能：

1)预防和/或治疗蒽环类肿瘤化疗药的心肌毒性；

2)缓解蒽环类化疗药引起的心肌细胞乳酸脱氢酶异常；

3)降低蒽环类化疗药引起的活性氧自由基升高；

4)缓解蒽环类化疗药引起的心肌细胞脂质过氧化；

5)缓解蒽环类化疗药引起的线粒体膜去极化及细胞凋亡。

具体的，所述药物、药物混合物或药物组合物为药学上可接受的任意剂型，包括片剂、胶囊剂、注射剂、颗粒剂、混悬剂和溶液剂中的至少一种。

本技术的核心在于，烟酰胺单核苷酸(NMN,β-Nicotinamide Mononucleotide)是烟酰胺磷酸核糖转移酶反应的产物,是NAD

通过NMN干扰阿霉素诱导的H9c2心肌细胞的心肌损伤实验中发现，NMN提高超氧化物歧化酶(SOD)和谷胱甘肽过氧化物酶(GSH)活性优于右雷佐生；降低乳酸脱氢酶(LDH)产生和丙二醛(MDA)水平也优于右雷佐生；抑制活性氧自由基(ROS)产生与右雷佐生相媲美。NMN可有效缓解阿霉素引起的线粒体膜去极化及细胞凋亡。因此可证明NMN通过抗氧化及减轻氧化应激和细胞凋亡达到抗阿霉素心肌损伤的作用。

与现有技术相比，本发明的有益效果：

NMN在改善心肌损伤相关特征上优于右雷佐生，原料成本低廉，且已有上市口服产品，因此是作为改善蒽环类药物心肌损伤具有潜力的备选药物，同时也发现了NMN的新价值应用。

附图说明

图1为实施例1中NMN对阿霉素及其类似物表柔比星(EPI)损伤心肌细胞的存活率的影响对比图，其中，C：空白对照组；DO：模型组1；EP：模型组2；DO+DE：阳性对照组；；&：模型组与对照组相比，存在统计学差异，P<0.05；*：表示与模型组1(DOX)相比，存在统计学差异，P<0.05；#：与模型组2(EPI)相比，P<0.05；

图2为实施例1中NMN对阿霉素损伤心肌细胞影响的光学显微镜图像示例，原始放大倍数＝400×，标尺＝100μm；其中，C：空白对照组；DO：模型组1；DO+DE：阳性对照组；DO+NMN组对比模型组，细胞数量多，形态正常；

图3为实施例2中NMN对阿霉素损伤心肌细胞LDH漏出率的影响对比图，其中，C：空白对照组；**：与模型组相比，P<0.05；

图4为实施例3中NMN对阿霉素损伤心肌细胞MDA的影响对比图，其中，C：空白对照组；**：与模型组相比，P<0.05；

图5为实施例4中NMN对阿霉素损伤心肌细胞ROS的影响对比图，其中，Control：空白对照组；**：与模型组相比，P<0.05；

图6为实施例5中NMN对阿霉素H9c2心肌细胞ATP水平的影响对比图；其中，C：空白对照组；**：与模型组相比，P<0.05；

图7为实施例6中NMN对阿霉素H9c2心肌细胞线粒体膜电位影响的荧光图像示例，原始放大倍数＝400×，标尺＝100μm；其中，C：空白对照组；DO：模型组；DO+DE：阳性对照组；DO+NMN组对比模型组，绿色荧光减弱；

图8为实施例6中NMN对阿霉素H9c2心肌细胞线粒体膜电位的影响对比图；其中，C：空白对照组；**：与模型组相比，P<0.05；

图9为实施例7中NMN对阿霉素H9c2心肌细胞凋亡影响的荧光图像示例，原始放大倍数＝400×，标尺＝100μm)；其中，C：空白对照组；DO：模型组；DO+DE：阳性对照组；DO+NMN组对比模型组，绿色荧光减弱；

图10为实施例7中NMN对阿霉素H9c2心肌细胞凋亡的影响对比图；其中，C：空白对照组；**：与模型组相比，P<0.05。

具体实施方式

为了使本发明目的、技术方案更加清楚明白，下面结合附图，对本发明作进一步详细说明。下述实施例中所述实验方法，如无特殊说明，均为常规方法；实施例中未注明具体技术或条件者，按照本领域内的文献所描述的技术或条件或者按照产品说明书进行；所述试剂和材料，如无特殊说明，均可从商业途径获得。

1、下列实施例采用的材料如下：

本发明所述蒽环类抗生素优选包括阿霉素、柔红霉素、阿克拉霉素、伊达比星、表柔比星或米托蒽醌中的一种，在本发明实施例中以阿霉素和表柔比星为例进行相应实验。

H9c2细胞株为大鼠心肌细胞，购买于美国ATCC细胞库。H9c2细胞在心肌细胞完全培养基溶液中培养，培养温度为37℃，在含有95％空气和5％二氧化碳(CO

心肌细胞完全培养基溶液：体积比为89％DMEM+10％FBS(FBS:胎牛血清，购自公司大连美仑生物技术有限公司；货号PWL001)+1％双抗(双抗：青霉素/链霉素溶液，购自公司大连美仑生物技术有限公司；货号MA0110)。

右雷佐生(DEXRA)：购自公司湖北威德利化学科技有限公司；货号Y694。

烟酰胺单核苷酸(NMN)：化学式C

DCFH-DA活性氧ROS荧光探针：购自公司大连美仑生物技术有限公司；货号MB4682；用量1ml；孵育时间15～60min；荧光波段：激发波长504nm，发射波长529nm。

CCK-8试剂盒，购自公司大连美仑生物技术有限公司；货号MA0218-L-10000T。

LDH检测试剂盒，购自公司北京索莱宝科技有限公司；货号BC0685。

TUNEL细胞凋亡检测试剂盒，购自公司上海碧云天生物技术有限公司；货号C1088。

ATP检测试剂盒，购自公司上海碧云天生物技术有限公司；货号，S0026B。

脂质氧化(MDA)检测试剂盒，购自公司上海碧云天生物技术有限公司；货号S0131S。

线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1)，购自公司北京索莱宝科技有限公司；货号M8650-100T。

2、实验过程

将H9c2细胞分别暴露于阿霉素(DOX)为0.5/1/2/10/20μM浓度下，筛选出阿霉素最佳浓度为5μM用于后续实验。H9c2细胞分别暴露于5μM Dox+20μM Dextra和5μMDox+20μMNMN下共同处理1天。用DMEM处理的细胞作空白对照，以右雷佐生处理的细胞做阳性对照。

3、药物及分组

实验细胞主要分成4组(n＝4)，空白对照组(control)、心肌损伤模型组(DOX)、阳性对照组(DOX+DEX)、DOX+NMN组(DOX+NMN)。

在检测前24h，心肌损伤模型组给予阿霉素5μM，阳性对照组给予右雷佐生20μM，NMN处理组给予NMN 20μM，其余两组分别为5μMDOX+20μMDexra以及5μMDOX+20μMNMN。

实施例1、NMN对阿霉素及其类似物导致H9c2心肌细胞损伤的保护疗效

H9c2心肌细胞用培养基稀释为10

结果如图1所示，相对于control组细胞活性106.7％，5μM DOX模型组细胞活性为46.0％，5μM的EPI模型组细胞活性为80.53％。阳性对照组细胞活性为106.8％，而合并使用10μM、20μM、30μM、50μM、100μM的NMN后，细胞活性分别为52.4％、65.5％、66.1％、67.40％、49.8％、39.0％。模型组1、2存活率明显低于空白对照组，NMN浓度在20μM、30μM明显提高细胞存活率。后续实验采用20μM NMN。合并使用NMN后，EPI+NMN组(5μM EPI+20μMNMN)细胞活性为100.30％。NMN对两种典型的蒽环类药物均具有保护作用，对心脏毒性较弱的表柔比星保护效果更佳，并显著提高细胞存活率。

结果如图2所示，相对于control组，DOX模型组细胞数量明显减少，漂浮的死亡细胞增多，细胞形态呈球形反映为应激状态。DO+NMN组细胞，对比模型组1，数量明显增多，与阳性对照组差别不大，提示20μM NMN在促细胞存活能力上即可与右雷佐生接近。

实施例2、NMN降低阿霉素H9c2心肌细胞乳酸脱氢酶(LDH)漏出的影响

每组(n＝4)每个样本取10

实施例3、NMN抑制阿霉素H9c2心肌细胞脂质过氧化水平的影响

氧自由基攻击生物膜中的多不饱和脂肪酸，引发脂质过氧化作用，并因此产生脂质过氧化物丙二醛(MDA)。MDA可与硫代巴比妥酸(TBA)缩合，形成红色产物，在532nm处有最大吸收峰。与实施例2采用相同的处理方式，培养24h后，按照MDA检测试剂盒说明书进行操作。结果显示(图4)，心肌损伤模型组MDA含量与对照组相比显著增高，P<0.05。DOX+NMN组较模型组均明显降低，证实NMN可抑制活性氧诱导的脂质过氧化。

实施例4、NMN对阿霉素H9c2心肌细胞活性氧(ROS)水平的影响

利用荧光探针DCFH-DA自由穿过细胞膜，进入细胞内后，可以被细胞内的酯酶水解生成DCFH。而DCFH不能通透细胞膜，从而使探针很容易被装载到细胞内。细胞内的活性氧可以氧化无荧光的DCFH生成有荧光的DCF。检测DCF的荧光就可以知道细胞内活性氧的水平。与实施例2采用相同的处理方式，培养24h后，各组装载DCFH-DA探针，利用激光共聚焦显微镜拍摄，再利用ImageJ图像处理软件处理图像(图5)。

结果显示(图5)，模型组ROS含量与对照组相比显著增高。DOX+NMN组较模型组均明显降低，证实NMN可抑制活性氧自由基产生。

实施例5、NMN对阿霉素H9c2心肌细胞ATP水平的影响

ATP作为最重要的能量分子，在细胞的各种生理、病理过程中起着重要作用。ATP水平的改变，会影响细胞的功能。通常细胞在凋亡、坏死或处于一些毒性状态下，ATP水平会下降。与实施例2采用相同的处理方式，培养24h后，按照ATP检测试剂盒说明书进行操作。

参照图6，心肌损伤模型组ATP含量与对照组相比显著降低。DOX+NMN组较模型组均明显提高，证实NMN可增加ATP产生，维护了线粒体功能。

实施例6、NMN对阿霉素H9c2心肌细胞线粒体膜电位的影响

与实施例2采用相同的处理方式，培养24h后，按照线粒体膜电位检测试剂盒(JC-1)说明书进行操作。取细胞进行JC-1染色缓冲液(1×)重悬后，利用激光共聚焦显微镜拍摄(图7)，利用ImageJ图像处理软件处理图像(图8)。红色荧光为聚集态JC-1探针，表明线粒体电位正常。绿色为单体JC-1探针表明线粒体膜电位异常，提示潜在的线粒体损伤。模型组绿色荧光强度与对照组相比显著提高，P<0.05。DOX+NMN组较模型组均明显降低，证实NMN可改善线粒体膜去极化，改善了线粒体功能。

实施例7、NMN对阿霉素H9c2心肌细胞凋亡的影响

与实施例2采用相同的处理方式，培养24h后，进行TUNEL染色，主要将细胞损伤DNA显示为绿色荧光，蓝色荧光为Dapi标记的细胞核(图9)。染色后经处理，利用激光共聚焦显微镜摄，利用图像分析软件Image-Pro plus 5.0(Media Cybemetrics Inc,USA)计数TUNEL阳性细胞数，TUNEL阳性细胞数/视野表示(图10)。

根据图10显示，模型组荧光强度对照组相比显著增强，DOX+NMN组较模型组荧光强度均明显降低，证实NMN可改善阿霉素诱导的细胞凋亡。

当然，以上仅为本发明的优选实施例而已，并不用于限制本发明，尽管参照前述实施例对本发明进行了详细的说明，对于本领域的技术人员来说，其依然可以对前述各实施例所记载的技术方案进行修改，或者对其中部分技术特征进行等同替换。凡在本发明的精神和原则之内，所作的任何修改、等同替换、改进等，均应包含在本发明的保护范围之内。