一种非编码RNA靶标及其抑制剂在制备促进骨髓间充质干细胞成骨分化的药物中的应用

摘要

本发明涉及一种非编码RNA靶标及其抑制剂在制备促进骨髓间充质干细胞成骨分化的药物中的应用。本发明首次发现miR‑498表达水平与hBMSCs成骨分化有关，抑制miR‑498的表达水平有助于hBMSCs成骨分化。人参皂苷RK

说明书

技术领域

本发明涉及生物制药领域，尤其涉及一种非编码RNA靶标及其抑制剂在制备促进骨髓间充质干细胞成骨分化的药物中的应用。

背景技术

骨组织工程在患者颌面部骨组织缺损修复中的应用研究不断深入，如何构建理想的组织工程骨移植物成为了研究热点。因此，骨组织工程中应用最广泛的人骨髓间充质干细胞 (hMSCs)成为重点研究对象，骨髓间充质干细胞成骨分化研究层出不穷。

申请人研究发现三种人参皂苷可促进骨髓间充质干细胞成骨分化，分别为人参皂苷RK₁、>5和RZ₁。人参皂苷RK₁、RG₅最早由韩国学者II>1最早由韩国学者Sang>3脱水而得。

人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁化学结构式及其生源降解途径如下所示：

人参皂苷RG₃的C20羟基与C21氢发生消除反应得到人参皂苷RK₁，人参皂苷RG₃的C20羟基与C22氢发生消除反应得到人参皂苷RG₅和RZ₁，人参皂苷RK₁与RG₅、RZ₁为双键位置异构，人参皂苷RG₅与RZ₁为双键顺反异构。其中，人参皂苷RZ₁双键两端的大基团在双键同侧，由于空间位阻原因，相对不稳定，这可能也是人参皂苷RZ₁比RK₁、RG₅较晚发现的原因。而且，由于人参皂苷RZ₁相对没有RK₁、RG₅稳定，所以含量低，标准品分离难度大，也限制了人参皂苷RZ₁的药理作用研究。

申请人经过长期研究，获得了关于人参皂苷RZ₁的系统性研究成果，包括人参皂苷RZ₁的高纯度单体制备方法、制剂工艺研究(提高水溶性和稳定性)、药理作用和质量控制方法。申请人发现人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁可促进骨髓间充质干细胞成骨分化，尤其以人参皂苷>1促进分化效果最好。申请人还发现了人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁促进骨髓间充质干细胞成骨分化的基因靶标非编码RNA>

申请人检索未发现现有技术存在人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁及其基因靶标miR-498与骨髓间充质干细胞成骨分化的相关报道。

发明内容

本发明的目的在于提供一种非编码RNA靶标及其抑制剂在制备促进骨髓间充质干细胞成骨分化的药物中的应用，以促进骨组织工程在骨组织缺损修复中的应用。

为实现上述目的，本发明提供了以下技术方案：

一种非编码RNA miR-498作为药物靶标在制备促进骨髓间充质干细胞成骨分化的药物中的应用，通过使miR-498表达下调促进骨髓间充质干细胞成骨分化。

一种非编码RNA miR-498的抑制剂在制备促进骨髓间充质干细胞成骨分化的药物中的应用，该抑制剂下调miR-498表达促进骨髓间充质干细胞成骨分化。

在本发明具体实施例中，所述抑制剂为人参皂苷RK₁、RG₅或RZ₁。

在本发明具体实施例中，所述抑制剂优选人参皂苷RZ₁。

一种促进骨髓间充质干细胞成骨分化的药物制剂，含有上述抑制剂以及药学上可以接受的载体或赋形剂，制成药学上可以接受的剂型。

在药物制剂领域，药学上可以接受的载体或赋形剂包括一种或多种固体、半固体或液体辅料，药学上可以接受的剂型包括片剂、丸剂、颗粒剂、糖浆剂、散剂、膏剂、注射剂等。

本发明首次发现下调非编码RNA miR-498表达水平可以促进骨髓间充质干细胞成骨分化，首次发现人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁为非编码RNA>1、>5和RZ₁通过下调骨髓间充质干细胞中非编码RNA>1效果最好。

附图说明

图1是流式细胞仪检测第3代hBMSCs表面标志物的结果图(×200)，可见hBMSCs 阳性表达间充质细胞表面标志CD44(A)、CD29(B)，阳性率均90％以上，不表达造血干细胞表面标志CD34(C)、CD45(D)。

图2是茜素红矿化染色观察hBMSCs成骨分化，茜素红染色阳性呈红色，钙化结节数量及阳性染色面积提示矿化程度，可见随着诱导时间增长，矿化程度明显加强。

图3是对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞内Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平。

图4是对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平。

图5是对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞内ALP活性。

图6是加药和不加药成骨诱导细胞内miR-498、Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平。

图7是加药和不加药成骨诱导细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平。

图8是加药和不加药成骨诱导细胞内ALP活性。

图9是实施例3的RT-qPCR检测结果。

具体实施方式

实施例1：骨髓间充质干细胞成骨分化与非编码RNA>

1、试验材料

α-MEM细胞培养液，Hyclone公司；

胎牛血清(FBS)，Gibco公司；

低糖DMEM培养基，Gibco公司；

miRcute miRNA提取分离试剂盒，天根生化科技(北京)有限公司；

TaKaRa逆转录试剂盒，TaKaRa公司；

TaKaRa RT-PCR试剂盒，TaKaRa公司；

BCA试剂盒，碧云天生物；

Runx2、OCN、β-actin一抗和二抗，美国Santa Cruz公司；

PCR引物委托上海吉玛制药技术有限公司设计合成。

2、试验方法

2.1人骨髓间充质干细胞(hBMSCs)的分离和培养

按标准骨髓穿刺程序，从自愿者髂后上棘处抽取骨髓5～10mL，肝素抗凝，用等量的PBS 稀释，按2:1比例加在Ficoll淋巴细胞分离液上，400g离心30min，取中间白膜层，用PBS 洗涤2遍，计数，重悬于基础培养液中：每100ml的α-MEM细胞培养液中含有10ml胎牛血清、2mM谷氨酰胺、1ml双抗。将一定密度的hBMSCs置于基础培养瓶中，然后于37℃、5％ CO₂的孵箱中培养。24h后，用新鲜培养液置换，然后每隔3天，更换一次培养液，直至细胞汇合度达到约90％，用0.05％胰酶-EDTA消化处理后传代，选择3-6代用于实验。

hBMSCs的流式细胞仪鉴定：取培养至3代hBMSCs，用PBS冲洗，计数，按照1×10⁶/>

2.2人骨髓间充质干细胞成骨分化培养

取培养至第3代的hBMSCs，用0.25％trypsin-EDTA消化，然后以3×10⁵/孔接种于6孔板中，并分为4组：对照组、成骨诱导4d、8d、12d组。对照组用基础培养液培养，成骨诱导组用成骨诱导培养基(含体积分数10％FBS的低糖DMEM培养基+0.1μmol/L地塞米松>

2.3茜素红S染色

茜素红是一种檀橙色偏黄的粉末，它能与成骨分化后的细胞内沉积的巧发生显色反应，从而得到红色的染色效果。将对照组、成骨诱导4d、8d、12d组的细胞吸去培养基，用PBS 冲洗，用4％多聚甲醛30分钟，吸去固定液，用PBS和去离子水冲洗，加入2％茜素红S染液于常温下染色30分钟，吸去染色液，用PBS和去离子水冲洗，至背景染色最浅，在倒置相差显微镜下观察染色结果。

2.4RT-qPCR检测miR-498、Runx2 mRNA、OCN mRNA含量变化

Runx2蛋白在成骨细胞的分化和骨形成方面起重要的作用，Runx2通过丝裂原活化蛋白激酶信号通路使其磷酸化调节其活性和功能，Runx2蛋白参与了多种信号转导途径，成骨分化过程中Runx2蛋白含量明显升高。成骨分化过程中骨钙素(OCN)含量也明显升高。Runx2 mRNA和OCN mRNA表达水平是成骨分化水平的重要指标。

收集对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞，按照miRcute miRNA提取分离试剂盒说明书提取miRNA，紫外测定所提取RNA的浓度及纯度，之后按照TaKaRa逆转录试剂盒说明书将其逆转录为cDNA，反应条件：25℃×30min，42℃×30min，85℃×5min。以cDNA为模板，按照TaKaRa RT-PCR试剂盒说明书加入相关试剂及引物，以β-actin为内参，在ABI-7300 实时荧光定量仪上进行PCR扩增。反应条件：95℃×3min，(95℃×12s，62℃×40s)×40循环。实验结果采用2^-ΔΔCt法进行表达量相对定量分析。

miR-498 stem-loop RT primer：5'-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGA GGAAAAACG-3'

miR-498 Forward：5'-ACACTCCAGCTGGGTTTCAAGCCAGGGGGCG-3'

miR-498 Reverse：5'-TGGTGTCGTGGAGTCG-3'

Runx2 Forward：5'-ATCCAGCCACCTTCACTTACACC-3'

Runx2 Reverse：5'-GGGACCATTGGGAACTGATAGG-3'

OCN Forward：5'-GGACCATCTTTCTGCTCACTCTG-3'

OCN Reverse：5'-ACCTTATTGCCCTCCTGCTT-3'

β-actin Forward：5'-GGGTCAGAAGGATTCCTATG-3'

β-actin Reverse：5'-GGTCTCAAACATGATCTGGG-3'

2.5 Western blot检测Runx2、OCN蛋白含量变化

Runx2蛋白在成骨细胞的分化和骨形成方面起重要的作用，Runx2通过丝裂原活化蛋白激酶信号通路使其磷酸化调节其活性和功能，Runx2蛋白参与了多种信号转导途径，成骨分化过程中Runx2蛋白含量明显升高。成骨分化过程中OCN含量也明显升高。

收集对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞，以β-actin为内参，步骤如下：用裂解液裂解各组细胞，匀浆后离心取上清，采用BCA试剂盒测蛋白含量。按60μg蛋白上样行SDS-PAGE 电泳。湿转印法将蛋白质转印至PVDF膜；50g/L脱脂奶粉溶液室温封闭2h，加入Runx2、 OCN一抗稀释液和β-actin一抗稀释液，室温摇床轻摇过夜；TBST洗膜，加入HRP标记的二抗，室温摇床轻摇1.5h；TBST充分漂洗，加入ECL显色液，自动凝胶分析仪照相，以相应蛋白条带灰度值除以内参β-actin灰度值校正得到相应蛋白的相对表达量。

2.6碱性磷酸酶(ALP)活性检测

取对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞，吸去培养液，PBS冲洗3次，用0.05％胰酶 -EDTA消化，刮下细胞，3000r/min离心10min，反复冻融3次至细胞完全裂解；将50μL细胞裂解液、50μLp-NPP(浓度1mg/mL)以及100μL2×DEA缓冲液充分混匀，37℃孵育45min，加入50μL3NNaOH终止反应，在405nm处测定OD值；等量样品以BCA法测定总蛋白含量，于562nm处测定OD值，分别以总蛋白含量为校对值，得出ALP活性。

3、试验结果

3.1人骨髓间充质干细胞的鉴定结果

流式细胞仪检测发现hBMSCs阳性表达间充质细胞表面标志CD44、CD29，阳性率均90％以上，不表达造血干细胞表面标志CD34、CD45。结果如图1所示。

3.2茜素红S染色结果

显微镜下观察染色可见，成骨诱导4d，hBMSCs出现红色矿化结节，随着诱导时间的增长，红色矿化结节面积进一步增大，而对照组无红色矿化结节出现。结果如图2所示。

3.3 RT-qPCR检测结果

与对照组相比，成骨诱导4d、8d、12d组细胞内Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平显著升高，且呈时间依赖性；与对照组相比，成骨诱导4d、8d、12d组细胞内miR-498表达水平显著降低，且呈时间依赖性。这表明，随着成骨诱导时间的增长，hBMSCs成骨分化率越来越高，而在hBMSCs成骨分化过程中，miR-498表达水平越来越低，呈现负相关。对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞内Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平如表1和图3。

表1成骨诱导7d、14d、21d细胞内miR-498、Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平

3.4 Westernblot检测结果

与对照组相比，成骨诱导4d、8d、12d组细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平显著升高，且呈时间依赖性。这表明，随着成骨诱导时间的增长，hBMSCs成骨分化率越来越高。对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平如表2和图4。

表2成骨诱导7d、14d、21d细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平

3.5碱性磷酸酶(ALP)活性检测结果

对照组、成骨诱导4d、8d、12d组细胞内ALP活性如表3和图5所示，可见与与对照组相比，成骨诱导4d、8d、12d组细胞内ALP活性升高，且呈时间依赖性。

表3成骨诱导7d、14d、21d细胞内ALP活性

该实施例可以看出，随着成骨诱导时间的增长，hBMSCs成骨分化率越来越高，而在 hBMSCs成骨分化过程中，miR-498表达水平越来越低，呈现负相关。

实施例2：人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁下调miR-498表达促进骨髓间充质干细胞成骨分化

1、试验材料

α-MEM细胞培养液，Hyclone公司；

胎牛血清(FBS)，Gibco公司；

低糖DMEM培养基，Gibco公司；

miRcute miRNA提取分离试剂盒，天根生化科技(北京)有限公司；

TaKaRa逆转录试剂盒，TaKaRa公司；

TaKaRa RT-PCR试剂盒，TaKaRa公司；

BCA试剂盒，碧云天生物；

Runx2、OCN、β-actin一抗和二抗，美国Santa Cruz公司；

PCR引物委托上海吉玛制药技术有限公司设计合成；

人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁自制，纯度大于98％。

2、试验方法

2.1人骨髓间充质干细胞(hBMSCs)的分离和培养

同实施例1。

2.2人骨髓间充质干细胞成骨分化培养

取培养至第3代的hBMSCs，用0.25％trypsin-EDTA消化，然后以3×10⁵/孔接种于6孔板中，并分为4组：对照组、不加药成骨诱导4d、8d、12d组、加药成骨诱导3d、7d组。对照组用基础培养液培养，不加药成骨诱导组用成骨诱导培养基(同实施例1)培养，加药成骨诱导组用含药成骨诱导培养基(在成骨诱导培养基基础上添加5μM人参皂苷RK₁、RG₅或>1)培养。各组每3d更换一次培养基。培养至设定时间后进行相关指标检测。

2.3茜素红S染色

将对照组、成骨诱导组细胞吸去培养基，用PBS冲洗，用4％多聚甲醛30分钟，吸去固定液，用PBS和去离子水冲洗，加入2％茜素红S染液于常温下染色30分钟，吸去染色液，用PBS和去离子水冲洗，至背景染色最浅，在倒置相差显微镜下观察染色结果。

2.4 RT-qPCR检测miR-498、Runx2 mRNA、OCN mRNA含量变化

收集对照组、成骨诱导组细胞，按照miRcute miRNA提取分离试剂盒说明书提取miRNA，紫外测定所提取RNA的浓度及纯度，之后按照TaKaRa逆转录试剂盒说明书将其逆转录为 cDNA，反应条件：25℃×30min，42℃×30min，85℃×5min。以cDNA为模板，按照TaKaRa RT-PCR试剂盒说明书加入相关试剂及引物，以β-actin为内参，在ABI-7300实时荧光定量仪上进行PCR扩增。反应条件：95℃×3min，(95℃×12s，62℃×40s)×40循环。实验结果采用2^-ΔΔCt法进行表达量相对定量分析。

miR-498 stem-loop RT primer：5'-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGA GGAAAAACG-3'

miR-498 Forward：5'-ACACTCCAGCTGGGTTTCAAGCCAGGGGGCG-3'

miR-498 Reverse：5'-TGGTGTCGTGGAGTCG-3'

Runx2 Forward：5'-ATCCAGCCACCTTCACTTACACC-3'

Runx2 Reverse：5'-GGGACCATTGGGAACTGATAGG-3'

OCN Forward：5'-GGACCATCTTTCTGCTCACTCTG-3'

OCN Reverse：5'-ACCTTATTGCCCTCCTGCTT-3'

β-actin Forward：5'-GGGTCAGAAGGATTCCTATG-3'

β-actin Reverse：5'-GGTCTCAAACATGATCTGGG-3'

2.5 Western blot检测Runx2、OCN蛋白含量变化

收集对照组、成骨诱导组细胞，以β-actin为内参，步骤如下：用裂解液裂解各组细胞，匀浆后离心取上清，采用BCA试剂盒测蛋白含量。按60μg蛋白上样行SDS-PAGE电泳。湿转印法将蛋白质转印至PVDF膜；50g/L脱脂奶粉溶液室温封闭2h，加入Runx2、OCN一抗稀释液和β-actin一抗稀释液，室温摇床轻摇过夜；TBST洗膜，加入HRP标记的二抗，室温摇床轻摇1.5h；TBST充分漂洗，加入ECL显色液，自动凝胶分析仪照相，以相应蛋白条带灰度值除以内参β-actin灰度值校正得到相应蛋白的相对表达量。

2.6碱性磷酸酶(ALP)活性检测

取对照组、成骨诱导组细胞，吸去培养液，PBS冲洗3次，用0.05％胰酶-EDTA消化，刮下细胞，3000r/min离心10min，反复冻融3次至细胞完全裂解；将50μL细胞裂解液、50μL p-NPP(浓度1mg/mL)以及100μL2×DEA缓冲液充分混匀，37℃孵育45min，加入50μL3N NaOH终止反应，在405nm处测定OD值；等量样品以BCA法测定总蛋白含量，于562nm 处测定OD值，分别以总蛋白含量为校对值，得出ALP活性。

3、试验结果

3.1人骨髓间充质干细胞的鉴定结果

流式细胞仪检测发现hBMSCs阳性表达间充质细胞表面标志CD44、CD29，阳性率均90％以上，不表达造血干细胞表面标志CD34、CD45。

3.2茜素红S染色结果

显微镜下观察染色可见，成骨诱导组hBMSCs出现红色矿化结节，随着诱导时间的增长，红色矿化结节面积进一步增大，而对照组无红色矿化结节出现。而且，加人参皂苷RK₁、RG₅成骨诱导7d与不加药成骨诱导12d红色矿化结节面积相当；加人参皂苷RZ₁成骨诱导3d与不加药成骨诱导12d红色矿化结节面积相当。

3.3 RT-qPCR检测结果

与对照组相比，成骨诱导组细胞内Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平显著升高，且呈时间依赖性；与对照组相比，成骨诱导组细胞内miR-498表达水平显著降低，且呈时间依赖性。这表明，随着成骨诱导时间的增长，hBMSCs成骨分化率越来越高，而在hBMSCs成骨分化过程中，miR-498表达水平越来越低，呈现负相关。

而且，加人参皂苷RK₁、RG₅成骨诱导7d与不加药成骨诱导12d细胞内miR-498、Runx2>1成骨诱导3d与不加药成骨诱导12d细胞内miR-498、Runx2>

表4成骨诱导细胞内miR-498、Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平(对照为1)

3.4 Westernblot检测结果

与对照组相比，成骨诱导组细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平显著升高，且呈时间依赖性。这表明，随着成骨诱导时间的增长，hBMSCs成骨分化率越来越高。

而且，加人参皂苷RK₁、RG₅成骨诱导7d与不加药成骨诱导12d细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平相当；加人参皂苷RZ₁成骨诱导3d与不加药成骨诱导12d细胞内Runx2、OCN>

表5成骨诱导细胞内Runx2、OCN蛋白表达水平(对照为1)

3.5碱性磷酸酶(ALP)活性检测结果

对照组、成骨诱导组细胞内ALP活性如表6和图8所示，可见与与对照组相比，成骨诱导组细胞内ALP活性升高，且呈时间依赖性。

而且，加人参皂苷RK₁、RG₅成骨诱导7d与不加药成骨诱导12d细胞内ALP活性相当；加人参皂苷RZ₁成骨诱导3d与不加药成骨诱导12d细胞内ALP活性相当。见表6和图8。

表6成骨诱导细胞内ALP活性(对照为1)

该实施例可以看出，人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁可以抑制hBMSCs中miR-498表达水平，进而具有促进hBMSCs成骨分化的作用，且人参皂苷RZ₁的药效强于RK₁、RG₅。

实施例3：过表达实验验证骨髓间充质干细胞成骨分化与miR-498靶标相关性

1、试验材料

α-MEM细胞培养液，Hyclone公司；

胎牛血清(FBS)，Gibco公司；

低糖DMEM培养基，Gibco公司；

miRcute miRNA提取分离试剂盒，天根生化科技(北京)有限公司；

TaKaRa逆转录试剂盒，TaKaRa公司；

TaKaRa RT-PCR试剂盒，TaKaRa公司；

BCA试剂盒，碧云天生物；

PCR引物委托上海吉玛制药技术有限公司设计合成，miR-498 mimics、miR-498 inhibitor、 miR-498 nagative control委托上海吉玛制药技术有限公司设计合成；

人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁自制，纯度大于98％。

2、试验方法

2、试验方法

2.1人骨髓间充质干细胞(hBMSCs)的分离和培养

同实施例1。

2.2人骨髓间充质干细胞转染和成骨分化培养

取培养至第3代的hBMSCs，用0.25％trypsin-EDTA消化，随机分组如下：

对照组：转染miR-498 nagative control(miR-498NC)；

低表达组：转染miR-498 inhibitor；

过表达组：转染miR-498>

过表达+人参皂苷RK₁干预组：转染miR-498>

过表达+人参皂苷RG₅干预组：转染miR-498>

过表达+人参皂苷RZ₁干预组：转染miR-498>

转染按照脂质体转染试剂盒Lipofectamine 2000说明书操作，miR-498 inhibitor、miR-498 mimics、miR-498 NC转染浓度均为25pmol/mL。转染5h后PBS冲洗换液，制成细胞悬液，以3×10⁵/孔接种于6孔板中，用成骨诱导培养基(同实施例1)培养，其中过表达+人参皂苷>1干预组、过表达+人参皂苷RG₅干预组、过表达+人参皂苷RZ₁干预组的成骨诱导培养基中还添加5μM人参皂苷RK₁、RG₅或RZ₁。培养48小时后进行相关指标检测。

2.3 RT-qPCR检测miR-498、Runx2 mRNA、OCN mRNA含量变化

收集各组细胞，按照miRcute miRNA提取分离试剂盒说明书提取miRNA，紫外测定所提取RNA的浓度及纯度，之后按照TaKaRa逆转录试剂盒说明书将其逆转录为cDNA，反应条件：25℃×30min，42℃×30min，85℃×5min。以cDNA为模板，按照TaKaRa RT-PCR试剂盒说明书加入相关试剂及引物，以β-actin为内参，在ABI-7300实时荧光定量仪上进行PCR 扩增。反应条件：95℃×3min，(95℃×12s，62℃×40s)×40循环。

实验结果采用2^-ΔΔCt法进行表达量相对定量分析。

miR-498 stem-loop RT primer：5'-CTCAACTGGTGTCGTGGAGTCGGCAATTCAGTTGA GGAAAAACG-3'

miR-498 Forward：5'-ACACTCCAGCTGGGTTTCAAGCCAGGGGGCG-3'

miR-498 Reverse：5'-TGGTGTCGTGGAGTCG-3'

Runx2 Forward：5'-ATCCAGCCACCTTCACTTACACC-3'

Runx2 Reverse：5'-GGGACCATTGGGAACTGATAGG-3'

OCN Forward：5'-GGACCATCTTTCTGCTCACTCTG-3'

OCN Reverse：5'-ACCTTATTGCCCTCCTGCTT-3'

β-actin Forward：5'-GGGTCAGAAGGATTCCTATG-3'

β-actin Reverse：5'-GGTCTCAAACATGATCTGGG-3'

3、试验结果

3.1人骨髓间充质干细胞的鉴定结果

流式细胞仪检测发现hBMSCs阳性表达间充质细胞表面标志CD44、CD29，阳性率均90％以上，不表达造血干细胞表面标志CD34、CD45。

3.2 RT-qPCR检测结果

与对照组相比，过表达组miR-498表达水平显著提高，低表达组miR-498表达水平显著降低；与过表达组相比，过表达+人参皂苷RK₁干预组、过表达+人参皂苷RG₅干预组、过表达+人参皂苷RZ₁干预组miR-498表达水平显著降低。

与对照组相比，过表达组Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平显著降低，低表达组Runx2 mRNA、OCN mRNA表达水平显著提高；与过表达组相比，过表达+人参皂苷RK₁干预组、过表达+人参皂苷RG₅干预组、过表达+人参皂苷RZ₁干预组Runx2>1干预组提高更为显著。

RT-qPCR检测结果如表7和图9所示。

表7 RT-qPCR检测结果(以miR-498 NC对照组为1)

该实施例可以看出，miR-498表达水平与hBMSCs成骨分化有关，抑制miR-498的表达水平有助于hBMSCs成骨分化。人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁可以抑制miR-498的表达水平，为miR-498表达的有效抑制剂，人参皂苷RK₁、RG₅和RZ₁通过抑制miR-498表达促进hBMSCs>1具有更为优异的药效。

本领域技术人员应当知道，上述具体实施方式仅用于解释本发明，本发明的保护范围并不局限于上述具体实施方式。

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