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促进转烟草促早花基因NtFT5烟草生根的培养基及获得短周期烟草的方法

摘要

本发明公开了促进转烟草促早花基因NtFT5烟草生根的培养基及获得短周期烟草的方法,其生根培养基为含0.1mg/L的NAA、pH为5.6~5.8的1/2MS固体培养基,该培养基能够促进转烟草促早花基因NtFT5的烟草生根,生根后能够正常的开花结籽,并将促早花性状通过种子遗传至下一代,播种后成功获得稳定遗传的短周期烟草后代,且烟草的生命周期缩短至2.5个月,能够满足基因功能鉴定及烟草育种研究的需要,具有良好的应用前景。

著录项

  • 公开/公告号CN104195097A

    专利类型发明专利

  • 公开/公告日2014-12-10

    原文格式PDF

  • 申请/专利权人 西南大学;

    申请/专利号CN201410449758.3

  • 申请日2014-09-04

  • 分类号C12N5/04;C12N15/84;A01H5/00;

  • 代理机构北京同恒源知识产权代理有限公司;

  • 代理人王贵君

  • 地址 400715 重庆市北碚区天生路2号

  • 入库时间 2023-12-17 02:29:08

法律信息

  • 法律状态公告日

    法律状态信息

    法律状态

  • 2017-02-22

    授权

    授权

  • 2015-01-07

    实质审查的生效 IPC(主分类):C12N5/04 申请日:20140904

    实质审查的生效

  • 2014-12-10

    公开

    公开

说明书

技术领域

本发明属于植物组织培养技术领域,涉及促进转烟草促早花基因NtFT5烟草生根的培养 基,还涉及利用该培养基获得周期烟草的方法。

背景技术

开花是作物生产中的一个重要的农艺性状,其受自主信号途径、光周期、春化途径及植 物激素赤霉素等信号途径综合影响。在拟南芥中,这些信号途径均通过磷脂酰乙醇胺结合蛋 白家族phosphatidylethanolamine-binding protein(PEBP)family成员发挥调控作用。在众多植物 中,PEBP家族成员之间已进化为相互拮抗的三个亚家族,它们是FLOWERING LOCUS T (FT)、TERMINAL FLOWER 1(TFL1)和MOTHER OF FT AND TFL1(MFT)。FT和MFT成员被 认为主要是促进开花的亚家族。拟南芥中过表达FT成员FT、TSF和MFT成员均能促进拟南芥 早花。

烟草作为一种模式生物,它具有最简单的生长习性和最可靠的转化过程。以烟草作为模式 植物,研究次级代谢产物生物合成途径、植物与细菌互作、植物与病虫害互作、维管组织的 形成以及花发育过程和花色均具有显著优势并已形成了研究特色。在众多植物中,许多关于 功能基因鉴定和顺式作用因子的基因组研究均以烟草为受体植物。然而,烟草生育周期长已 经成为烟草品种培育的主要限制因素。研究发现,拟南芥FT基因能缩短开花时间,还发现 烟草NtFT4,NtFT5也能促进烟草早花,但是现有条件下,此基因转化后植株尽管能在培养 基上早花,但是花朵通常很快凋零,不能形成种子,不能生根,不能获得稳定遗传的短周期 烟草苗。因此,急需一种能够获得稳定遗传的、短周期转基因烟草苗的方法,且获得的转基 因烟草缩短开花时间,能够生根并形成种子。

发明内容

有鉴于此,本发明的目的之一在于提供促进转烟草促早花基因NtFT5烟草生根的培养基; 本发明的目的之二在于提供利用所述培养基获得稳定遗传的、短周期烟草的方法。

为实现上述发明目的,本发明提供如下技术方案:

1、促进转烟草促早花基因NtFT5烟草生根的培养基,所述生根培养基为含0.1mg/L的 NAA、pH为5.6~5.8的1/2MS固体培养基,所述1/2MS为大量元素减半的MS培养基。

优选的,所述生根培养基为1/2MS+0.1mg/L NAA+30g/L蔗糖+7.5g/L琼脂,调节pH 至5.8。

2、利用所述培养基获得短周期烟草的方法,包括如下步骤:

A.以SEQ ID NO.1和SEQ ID NO.2所示序列为引物,烟草cDNA为模板进行PCR扩增, 获得烟草促早花基因NtFT5,将扩增获得的烟草促早花基因NtFT5连入pCXSN载体Xcm I 酶切位点处,得NtFT5-pCXSN重组质粒;将所得NtFT5-pCXSN重组质粒转化农杆菌,得含 有NtFT5-pCXSN重组质粒的工程菌;

B.将步骤A所得工程菌采用叶盘法转化烟草,在含1mg/L 6-BA,0.1mg/L NAA30g/L蔗 糖,8g/L琼脂,pH为5.8的MS培养基上共培养3天,然后在1mg/L 6-BA,0.1mg/L NAA, 250mg/L羧苄青霉素,20mg/L潮霉素,30g/L蔗糖,8g/L琼脂,pH为5.8的MS培养基上 诱导抗性苗,然后利用PCR筛选含有潮霉素基因的植株,得T0代转NtFT5基因烟草;

C.将步骤B所得T0代转NtFT5基因烟草在所述的培养基上生根培养,生根后移栽至培 养基质中培养至开花、结籽,将获得的种子萌发后获得短周期烟草。

优选的,步骤A中,所述PCR扩增的条件为95℃预变性3min;94℃变性30s,54.0℃退 火45s,72℃延伸40s,循环35次;最后72℃后延伸10min。

优选的,步骤A中,所述农杆菌为LBA4404。

本发明的有益效果在于:本发明针对烟草转促早花基因FLOWERING LOCUS T(FT)后, 难以生根结子、无法获得稳定遗传的短周期烟苗后代的情况,在生根培养基及培养方法上进 行了系统研究和优化,所得培养基生根率高,试管苗移栽成活率高,能产生可育性种子,成 功获得稳定遗传的短周期烟苗后代,转NtFT5基因烟苗的生命周期缩短至2.5个月,能够满 足基因功能鉴定及烟草育种研究的需要,具有良好的应用前景。

附图说明

为了使本发明的目的、技术方案和有益效果更加清楚,本发明提供如下附图:

图1为NtFT5-pCXSN重组质粒示意图。

图2为转NtFT5基因烟草抗性苗。

图3为转NtFT5基因烟草在D3培养基中培养后生根情况。

图4转NtFT5基因烟草生根后移栽至泥炭栽培基质(品氏)中成功开花。

图5为NtFT5基因烟草T1代长势良好。

具体实施方式

下面将结合附图,对本发明的优选实施例进行详细的描述。实施例中未注明具体条件的 实验方法,通常按照常规条件,例如分子克隆实验指南(第三版,J.萨姆布鲁克等著)中所 述的条件,或按照制造厂商所建议的条件。

实施例1、烟草促早花基因(FLOWERING LOCUS T)NtFT5转基因载体构建

根据在Genbank烟草GSS数据库中(FH969747.1)序列设计扩增烟草NtFT5基因编码区 的引物,上游引物NtFT5-F为:5’-atgccaagagaacgtgaacc-3’(SEQ ID NO.1);下游引物NtFT5-R 为:5’-tcaatcggcagaccttctac-3’(SEQ ID NO.2);然后以烟草叶片cDNA为模板,以SEQ ID NO.1 和SEQ ID NO.2所示序列为引物,进行PCR扩增。PCR扩增体系为25μL,各组分体积如下: cDNA 1.0μL,NtFT5-F 1.0μL,NtFT5-R 1.0μL,Green Master Mix酶12.5μL,ddH2O  9.5μL,然后按如下程序进行PCR扩增:95℃预变性3min;94℃变性30s,54.0℃退火45s, 72℃延伸40s,循环35次;72℃延伸10min。

将PCR扩增产物按照Transgen公司的EasyPure Quick Gel Extraction Kit说明书进行回收 并纯化,获得纯化后的NtFT5扩增产物。

将pCXSN载体(pCXSN载体公开于Chen,S.,et al.,A versatile zero background T-vector  system for gene cloning and functional genomics.Plant Physiol,2009.150(3):p.1111-1121.质粒含 自杀基因ccdB,经Xcm I酶切产生末端T,可与带A末端的目的基因通过TA克隆策略,获 得含有目的基因的过表达载体)用NEB公司的Xcm I进行酶切,酶切体系如下:pCXSN质 粒1.4μg,Xcm I 1.0μL,NEB buffer 25.0μL,ddH2O加至50μL,然后在37℃条件下酶切3 小时。酶切后将pCXSN载体线性片段进行回收,然后与回收的纯化的NtFT5扩增产物按摩 尔比为6:1~7:1连接,连接体系如下:

连接条件:25℃条件下连接3小时。

将连接产物加入-80℃取出刚融化的DH5α感受态,冰浴30min,然后42℃热激45s,冰 浴2min后加入300μL LB培养基,于37℃200rpm摇床培养1小时;培养后将菌液离心后 弃上清,将菌体涂至含50mg/L Kan的LB抗性平板上,于37℃恒温箱倒置培养过夜。

次日,挑单菌落至20μL ddH2O中,采用菌落PCR对阳性克隆进行鉴定。PCR引物为:

NtFT5-F:5′-atgccaagagaacgtgaacc-3′(SEQ ID NO.1);

NOS-R:5′-taaatgtataattgcgggactc-3′(SEQ ID NO.3);

PCR体系如下:模板4.0μL,NtFT5-F 0.5μL,NOS-R 0.5μL,Green Master Mix 酶5μL;

PCR反应程序为:95℃预变性10min;94℃变性30s,52.0℃退火45s,72℃延伸50s, 循环28次;最后72℃延伸10min。

由于NOS-R引物距离目的基因插入位点下游200bp,因此,当扩增片段PCR产物长度比 NtFT5基因片段大约200bp时,则认定为初步筛选到正向连接的阳性克隆。将初步筛选到的 阳性菌液,取4.0μL至6mL LB(含Kan)液体培养基过夜培养,然后取500μL菌液送华大 测序。500μL待保存永久菌,5mL菌液离心收集沉淀存于-20℃。测序结果表明,NtFT5的 核苷酸序列如SEQ ID NO.4所示,且NtFT5基因片段连入了pCXSN载体,得NtFT5- pCXSN重组质粒,结构如图1所示。

实施例2、制备含NtFT5-pCXSN重组质粒的工程菌

将NtFT5-pCXSN重组质粒转化-80℃取出的农杆菌LBA4404感受态,具体如下:将 100~200ng NtFT5-pCXSN重组质粒加入感受态中,混匀,冰浴30min后,液氮浴1min,然 后于37℃条件下热激5min,加入800μL YEB培养基,于28℃200rpm培养4至6h;培养 后离心去800μL上清,剩余菌液悬浮后均匀涂布于YEB固体平板中(含100mg/L的Kan, 20mg/L的Str和40mg/L的Rif),28℃暗培养36至48h,得含NtFT5-pCXSN重组质粒的工 程菌。

实施例3、转NtFT5基因烟草的获得

(1)叶盘法遗传转化烟草

取含NtFT5-pCXSN重组质粒的工程菌菌液,加至50mL YEB液体培养基中(含Kan、 Rif、Str),28℃、200rpm条件下暗培养至对数生长期;转化材料选择生长2月左右的红花大 金元无菌苗(无菌苗培养基为:MS+30g/L蔗糖+8g/L Agar,pH 5.8),转化前3日将生长 到2月左右无菌苗,避开边缘和主脉,将叶片用打孔器处理成直径0.5cm的叶盘,接种于含 1mg/L 6-BA,0.1mg/L NAA,30g/L蔗糖和8g/L Agar,pH为5.8的MS培养基上于28℃预 培养3天。然后将生长至对数生长期的含NtFT5-pCXSN重组质粒的工程菌于4000rpm离心 15分钟,弃上清,收集菌体,菌体用30mL MS液体培养基重悬。叶片用无菌镊子转移至重 悬菌液中,侵染10min,无菌滤纸吸干菌液,叶片转移至含1mg/L 6-BA,0.1mg/L NAA, 30g/L蔗糖和8g/L Agar,pH为5.8的MS培养基上于28℃条件下暗培养3天。

(2)转基因植株的筛选

将暗培养的叶片用含500mg/L羧苄青霉素的无菌水洗涤4次,转移到含1mg/L 6-BA, 0.1mg/L NAA,250mg/L羧苄青霉素,20mg/L潮霉素,30g/L蔗糖,8g/L Agar,pH为5.8 的MS培养基上筛选培养,每两周继代一次,获得分化出来的抗性苗,结果如图2所示。然 后将分化出来的抗性苗扩增Hpt基因筛选阳性转基因植株,扩增Hpt基因的引物如下:

Hpt-F:5′-ctgctccatacaagccaaccac-3′(SEQ ID NO.5);

Hpt-R:5′-gaaaaagcctgaactcaccgc-3′(SEQ ID NO.6)。

经检测共获得25株T0代转NtFT基因烟草。

(3)转基因植株的生根培养

为保证转基因阳性植株能顺利继代收种,将转基因阳性植株移至D1,D2,D3和D4四 种生根培养基中进行生根培养,统计生根情况,结果如表1所示。

生根培养基D1:1/2MS+30g/L蔗糖+7.5g/L Agar,pH 5.8;

生根培养基D2:1/2MS+250mg/L羧苄青霉素+20mg/L潮霉素+30g/L蔗糖+7.5g/L Agar,pH 5.8;

生根培养基D3:1/2MS+0.1mg/L NAA+30g/L蔗糖+7.5g/L Agar,pH 5.8;

生根培养基D4:1/2MS+0.1mg/L NAA+250mg/L羧苄青霉素+20mg/L潮霉素+30g/L 蔗糖+7.5g/L Agar,pH 5.8。

表1、阳性转基因植株生根统计结果

结果显示,转基因阳性苗D3和D4四种生根培养基中都能生根,但是在D4生根培养基 中的生根率低,低于10%。另外,T0代转基因阳性苗在D1,D2和D4 3种生根培养基上虽然 能够正常形成花蕾、开花,但由于花期较短,很难结籽。而在D3生根培养基上培养的T0代 转基因阳性苗不但生根率高(图3),移栽至培养基质中还可以成功开花(图4)并结籽,而 且获得的种子经播种后能萌发(图5),且生长周期缩短至2.5个月。上述研究表明,本发明 通过优化生根培养基配方,能诱导转基因阳性植株生根,收T0代转基因阳性植株的种子后, 能过获得稳定遗传的短周期烟草品系,该方法为烟草的遗传育种提供了基础。

上述实施例中MS培养基是1962年Murashige和Skoog为培养烟草细胞而设计的培养基, 是植物组织培养中的常用培养基;1/2MS培养基是在MS培养基中大量元素减半的培养基。 生根培养基D4,是发明人针对烟草转促早花基因FLOWERING LOCUS T(FT)后优化获得的 培养基配方。

最后说明的是,以上优选实施例仅用以说明本发明的技术方案而非限制,尽管通过上述 优选实施例已经对本发明进行了详细的描述,但本领域技术人员应当理解,可以在形式上和 细节上对其作出各种各样的改变,而不偏离本发明权利要求书所限定的范围。

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