声明
摘要
符号说明
1.引言
1.1 DR和ROP的背景介绍
1.2 DR中BRB的变化
1.3 骨髓来源祖细胞
1.4 EPO细胞因子治疗概述
1.5 EPO、EPOR和CD131信号通路
2.材料与方法
2.1 实验线路图
2.2 材料
2.2.1 哺乳动物细胞株
2.2.2 大肠杆菌菌株
2.2.3 质粒
2.2.4 抗体(一抗和二抗)
2.2.5 试剂
2.2.6 引物
2.2.7 实验仪器
2.3 方法
2.3.1 实验性糖尿病动物模型的建立
2.3.2 ROP模型的建立
2.3.3 慢病毒载体构建,病毒包装和浓缩
2.3.4 质粒的大量制备
2.3.5 FLIVO原位凋亡检测
2.3.6 视网膜细胞凋亡检测(TUNEL)
2.3.7 视网膜细胞消化和流式分析
2.3.8 视网膜平铺片,全组织免疫组化
2.3.9 FITC-dextran荧光灌注
2.3.10 视网膜冰冻切片免疫荧光染色分析
2.3.11 分离BMP
2.3.12 构建BMT联合DR嵌合体小鼠
2.3.13 玻璃体腔注射病毒和BMP
2.3.14 视网膜电生理检测Ops
2.3.15 MTT细胞增殖分析
2.3.16 BRB渗透性功能检查
2.3.17 BrdU摄入实验
2.3.18 Matrigel血管形成实验
2.3.19 Transwell细胞迁移实验
2.3.20 DAF-FM染色
2.3.21 细胞免疫荧光染色分析(Immunocytochemistry)
2.3.22 RT-PCR
2.3.23 Real time-PC
2.3.24 荧光素酶报告基因实验(Luciferase REPOrter Assay)
2.3.25 细胞总蛋白的制备与定量
2.3.26 免疫印迹分析(Western blotting)
2.3.27 免疫共沉淀(Coimmunoprecipitation,CoIP)
2.3.28 数据统计
3.实验结果
3.1 EPO对早期DR动物模型和ROP模型的保护作用
3.1.1 EPO对DR的BRB的保护作用
3.1.2 EPO对DR视网膜凋亡的保护作用
3.1.3 EPO对DR小鼠视功能的保护作用
3.1.4 EPO对ROP中BRB的保护作用
3.1.5 EPO对ROP视网膜稠亡的保护作用
3.1.6 EPO对ROP小鼠视功能的保护作用
3.2 组织学分析EPO对DR及ROP模型中BRB相关微血管细胞的保护作用
3.2.1 EPO对早期DR视网膜中BRB组成细胞的保护作用
3.2.2 EPO对ROP小鼠视网膜中BRB组成细胞的保护作用
3.3 EPO促进BMP迁移到受损伤的视网膜并分化为BRB组成细胞
3.3.1 早期DR模型中EPO能够招募BMP并促进其分化
3.3.2 在ROP模型中EPO能够促进BMP迁移和分化
3.4 EPO受体在BMP中的表达谱
3.4.1 DR联合BMT中循环BMP的鉴定
3.4.2 EPO,EPOR和CD131形成复合物,介导EPO信号通路
3.4.3 在BMP中抑制EPO受体的表达对BMP的影响
3.5 EPO招募骨髓细胞亚群与VEGF信号通路的关系
3.6 抑制EPO的受体对EPO招募BMP和治疗早期DR和ROP疾病的影响
3.6.1 抑制EPO的受体对EPO招募BMP到受损伤视网膜中和治疗早期DR的影响
3.6.2 抑制EPO的受体对EPO促进BMP迁移和治疗ROP模型的影响
3.6.3 EPO+/CD131+分选BMP在ROP模型中的分布情况
3.7 EPO治疗早期DR和ROP视网膜中血管相关细胞的细胞黏附分子的变化
3.7.1 EPO治疗早期DR视网膜中血管相关细胞的细胞黏附分子的变化
3.7.2 EPO治疗ROP视网膜中血管相关细脆的细胞黏附分子的变化
3.8 EPO在体外通过Akt-eNOS信号通路促进BMP增殖、迁移、血管生成
3.8.1 EPO在体外促进BMP增殖
3.8.2 EPO在体外促进BMP迁移
3.8.3 EPO在体外激活Akt-eNOS信号通路
3.8.4 EPO在体外促进BMP的血管生成
4.讨论
4.1 EPO对早期DR和ROP保护作用
4.2 EPO与VEGF的关系
4.3 BMP与BRB
4.4 EPO与BMP的关系
4.5 CD131在EPO的非造血功能中的作用
5.结论
参考文献
致谢
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