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Efficient CRISPR/Cas9-Mediated Gene Knockin in Mouse Hematopoietic Stem and Progenitor Cells

机译:小鼠造血干细胞和祖细胞中高效的CRISPR / Cas9介导的基因敲除

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摘要

Mutations accumulating in hematopoietic stem andprogenitor cells (HSPCs) during development cancause severe hematological disorders. Modelingthese mutations in mice is essential for understandingtheir functional consequences. Here, we describe anefficient CRISPR/Cas9-based system to knock inand repair genes in mouse HSPCs. CRISPR/Cas9 ribonucleoproteins,in combination with recombinantadeno-associated virus (rAAV)-DJ donor templates,led to gene knockin efficiencies of up to 30% in theLmnb1 andActbloci of mouse HSPCs in vitro. The targetedHSPCs engraft and reconstitute all immune celllineages in the recipient mice. Using this approach,we corrected a neomycin-disrupted Rag2 gene. TheRag2-corrected HSPCs restore B and T cell developmentin vivo, confirming the functionality of theapproach. Our method provides an efficient strategyto study gene function in the hematopoietic systemand model hematological disorders in vivo, withoutthe need for germline mutagenesis.
机译:发育过程中在造血干细胞和祖细胞(HSPC)中积累的突变可能导致严重的血液学疾病。在小鼠中对这些突变进行建模对于理解其功能后果至关重要。在这里,我们描述了一种基于CRISPR / Cas9的高效系统,可以敲入小鼠HSPC中的基因并修复基因。 CRISPR / Cas9核糖核蛋白与重组腺相关病毒(rAAV)-DJ供体模板结合后,在小鼠HSPC的Lmnb1和Actbloci中导致基因敲除效率高达30%。靶向的HSPCs移植并重建了受体小鼠中的所有免疫细胞系。使用这种方法,我们纠正了新霉素破坏的Rag2基因。经Rag2校正的HSPC在体内恢复B和T细胞发育,从而证实了该方法的功能。我们的方法提供了一种有效的策略来研究造血系统中的基因功能并在体内模拟血液学疾病,而无需进行种系诱变。

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