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致谢
前言
1文献综述:十字花科植物花粉发育的分子生物学研究
1.1植物花粉发育概述
1.1.1花粉发育过程
1.1.2花粉壁发育
1.1.3花药绒毡层与花粉发育过程
1.2十字花科植物花粉发育相关基因
1.2.1与花粉发育起始相关的基因
1.2.2与减数分裂相关的基因
1.2.3与花粉有丝分裂Ⅰ相关的基因
1.2.4生殖细胞有丝分裂中的相关基因
1.3十字花科植物花粉在授粉过程中表达的基因
1.3.1花粉黏附
1.3.2花粉水合
1.3.3花粉萌发和花粉管生长
1.4十字花科植物花粉基因表达的大规模分析
1.4.1转录组分析鉴定花粉表达基因
1.4.2花粉发育基因动态表达研究
1.4.3花粉发育基因群体分析
1.5花粉壁发育相关基因的研究
1.5.1影响花粉外壁发育的基因
1.5.2影响花粉内壁发育的基因
1.5.3花粉壁中的蛋白质与花粉壁发育
1.6多聚半乳糖醛酸酶在花粉发育中的研究
1.6.1多聚半乳糖醛酸酶基因的分类、结构及表达调控
1.6.2多聚半乳糖醛酸酶基因与花粉发育
2白菜ajhGMS两用系花粉败育原因分析与polG-CMS系、oguCMS系创建
2.1材料与方法
2.1.1植物材料
2.1.2植株的形态观察与遗传分析
2.1.3花蕾的细胞学观察
2.2结果与分析
2.2.1‘Bcajh97-01A’与‘Bcajh97-01B’的差异仅表现在花粉花药发育上
2.2.2‘Bcajh97-01A’花粉败育源自小孢子减数分裂胞质分裂的异常
2.2.3创建获得‘Bcpol97-05A’和‘Bcogu97-06A’
2.3讨论
2.3.1‘Bcajh97-01A’为雄性减数分裂的胞质分裂突变体mmc
2.3.2 mmc突变体花粉败育的可能原因和发育模型
2.3.3共享保持系的多种雄性不育系是花粉发育研究的理想材料
3白菜三种雄性不育系及其保持系花蕾转录组差异的cDNA-AFLP分析
3.1材料与方法
3.1.1植物材料与主要试剂
3.1.2总RNA的提取、检测与cDNA的合成
3.1.3 cDNA-AFLP分析
3.1.4差异片段的检测、克隆和测序
3.1.5 RT-PCR
3.1.6探针标记及Northern杂交
3.2结果与分析
3.2.1提取的白菜组织总RNA及合成的cDNA质量较高
3.2.2‘Bcajh97-01A’与‘Bcajh97-01B’花蕾转录组差异的cDNA-AFLP分析
3.2.3‘Bcajh97-01A’与‘Bcajh97-01B’花蕾差异表达基因的功能分类
3.2.4‘Bcpol97-05A’、‘Bcogu97-06A’与‘Bcajh97-01B’花蕾转录组差异的cDNA-AFLP分析
3.2.5‘Bcpol97-05A’、‘Bcogu97-06A’与‘Bcajh97-01B’花蕾差异表达基因的功能分类
3.2.6比较发现三种不同雄性不育系花蕾表达基因不尽相同
3.2.7 RT-PCR分析发现差异表达片段具不同的时空表达特性
3.3讨论
3.3.1转录组分析能够探讨基因突变引起的下游基因的表达变化
3.3.2雄性不育系和保持系花蕾差异表达的片段可能代表花粉花药发育相关基因
3.3.3不同不育基因作用引起不同的花粉败育
3.3.4三种雄性不育系与其共同保持系花蕾差异表达的基因各具不同的表达动态
4白菜三种雄性不育系及其保持系花蕾转录组差异的基因芯片分析
4.1材料与方法
4.1.1植物材料
4.1.2总RAN的分离及检测
4.1.3与拟南芥基因芯片ATH1的杂交及数据处理
4.2结果与分析
4.2.1‘Bcajh97-01A’与‘Bcajh97-01B’花蕾转录组差异的基因芯片分析
4.2.2‘Bcajh97-01A’与‘Bcajh97-01B’花蕾差异表达基因的功能分类
4.2.3‘Bcpol97-05A’与‘Bcajh97-01B’花蕾转录组差异的基因芯片分析
4.2.4‘Bcpol97-05A’与‘Bcajh97-01B’花蕾差异表达基因的功能分类
4.2.5‘Bcogu97-06A’与‘Bcajh97-01B’花蕾转录组差异的基因芯片分析
4.2.6‘Bcogu97-06A’与‘Bcajh97-01B’花蕾基因表达的功能分类
4.2.7基因芯片分析三种雄性不育系花蕾转录组的异同
4.2.8基因芯片结合cDNA-AFLP技术分析三种雄性不育系与其保持系花蕾转录组差异
4.3 讨论
4.3.1利用拟南芥ATH1基因芯片分析白菜花蕾转录组是可行的
4.3.2白菜不同雄性不育遗传模式花粉基因表达相似但不尽相同
5细胞壁合成与调控相关基因在花粉发育中的功能分析:多聚半乳糖醛酸酶基因BcMF2
5.1材料与方法
5.1.1植物材料与主要试剂
5.1.2基因时空表达模式分析
5.1.3反义表达载体的构建
5.1.4反义表达载体对菜心的遗传转化
5.1.5转基因植株的分子检测
5.1.6转基因植株的形态与细胞学观察
5.2结果与分析
5.2.1 BcMF2在不同发育阶段有不同的表达特点
5.2.2 BcMF2反义表达载体的构建及对农杆菌的转化
5.2.3获得反义BcMF2表达载体转化菜心植株
5.2.4转基因植株35S-bcmf2和A9-bcmf2的分子检测
5.2.5转基因植株35S-bcmf2和A9-bcmf2的形态与细胞学观察
5.3讨论
5.3.1 BcMF2是一个在花粉发育“早期”表达的PG基因
5.3.2 BcMF2表达受抑制导致花粉管顶端膨大
5.3.3 BcMF2表达受抑制影响花粉壁的发育
6细胞壁合成与调控相关基因在花粉发育中的功能分析:多聚半乳糖醛酸酶基因BcMF9
6.1材料与方法
6.1.1植物材料与主要试剂
6.1.2差异片段cDNA和DNA全长的分离
6.1.3核苷酸序列分析
6.1.4基因的时空表达模式分析
6.1.5反义表达载体的构建
6.1.6反义表达载体对菜心的遗传转化
6.1.7转基因植株的分子检测
6.1.8转基因植株的形态与细胞学观察
6.2结果与分析
6.2.1获得BcMF9的cDNA和DNA全长序列
6.2.2序列特征分析表明BcMF9是一个典型的PG基因
6.2.3 BcMF9在发育中的绒毡层和小孢子中表达
6.2.4 BcMF9反义表达载体的成功构建及对农杆菌的转化
6.2.5获得BcMF9反义表达载体转化菜心植株
6.2.6转基因植株35S-bcmf9和A9-bcmf9的分子检测
6.2.7转基因植株35S-bcmf9和A9-bcmf9的形态与细胞学观察
6.3 讨论
6.3.1 BcMF9是一个典型的PG基因
6.3.2 BcMF9作用于花粉发育晚期
6.3.3 BcMF9表达受抑制导致花粉管不能正常生长
6.3.4 BcMF9与花粉壁的发育相关
6.3.5 BcMF9可能通过作用于绒毡层PCD而调控花粉壁发育
6.3.6 BcMF9可能从绒毡层分泌而来直接作用于花粉壁发育
7三个与花粉发育相关的多聚半乳糖醛酸酶基因的结构、表达及功能比较
7.1材料与方法
7.1.1实验材料
7.1.2基因时空表达模式分析
7.1.3同源基因的克隆和测序
7.1.4基因序列分析
7.1.5分子进化树构建
7.2结果与分析
7.2.1 BcMF2、BcMF6和BcMF9是不同的PG基因
7.2.2 BcMF2、BcMF6和BcMF9具有不同的时空表达特点
7.2.3 BcMF2、BcMF6和BcMF9在十字花科植物中的进化
7.3讨论
7.3.1 BcMF2、BcMF6和BcMF9可能在花粉发育中扮演不同的角色
8新基因BcMF10在花粉发育中的功能分析
8.1材料与方法
8.1.1植物材料与主要试剂
8.1.2差异片段cDNA和DNA全长的分离
8.1.3核苷酸序列分析
8.1.4基因时空表达模式分析
8.1.5 RNAi表达载体的构建
8.1.6 RNAi表达载体对菜心的遗传转化
8.1.7转基因植株的X-Gluc组织化学染色检测
8.1.8转基因植株的分子检测
8.1.9转基因植株的形态与细胞学观察
8.2结果与分析
8.2.1分离获得BcMF10的cDNA和DNA全长
8.2.2 BcMF10为具3个内含子和4个外显子的功能未知新基因
8.2.3 BcMF10是一个在花粉和绒毡层表达的基因
8.2.4构建获得BcMF10干涉基因表达载体并导入农杆菌
8.2.5获得BcMF10 RNAi表达载体转化菜心植株
8.2.6 GUS活性仅在转基因植株的花药中检测到
8.2.7转基因植株A9-bcmf10的分子检测
8.2.8转基因植株A9-bcmf10的形态与细胞学观察
8.3讨论
8.3.1 BcMF10可能与信号转导途径相关
8.3.2 BcMF10在‘Bcajh97-01B’和‘Bcpol97-05A’中具不同表达模式
8.3.3 BcMF10在花粉发育早期表达
8.3.4 BcMF10表达受抑制导致花粉萌发异常
结论
参考文献
博士在读期间发表的论文