声明
致谢
摘要
缩略语
1.引言
2.仪器设备和试剂
2.1 仪器设备
2.2 主要生物化学试剂
2.3 抗体
2.4 所用溶液配方
2.4.1 细胞培养、转染相关溶液细胞培养、转染相关溶液
2.4.2 DNA琼脂糖凝胶电泳相关溶液
2.4.3 Western blot相关溶液
2.4.4 克隆相关试剂
2.4.5 染色质免疫共沉淀相关试剂
3 材料和方法
3.2.1 荧光素酶报告基因载体的构建
3.2.2 荧光素酶报告基因检测
3.2.3 Real-time PCR实验
3.2.4 Western Blot
3.2.5 免疫组织化学
3.2.6 染色质免疫共沉淀
3.2.7 MTT
3.2.8 流式细胞仪检测细胞周期
3.2.9 平板细胞克隆形成实验
3.2.10 Transwell小室迁移实验
3.2.11 Transwell小室侵袭实验
3.2.12 EdU渗透实验
3.2.13 裸鼠成瘤及5-FU给药实验
3.2.14 临床样本分析
3.2.15 统计学分析
4 结果
4.1 构建过表达/干扰HMGA2的结直肠癌细胞系
4.1.1 不同结直肠癌细胞系中HMGA2的表达
4.1.2 建立稳定过表达/干扰HMGA2的单克隆结直肠癌细胞系
4.2 HMGA2促进结肠癌细胞迁移、侵袭、EMT以及增殖
4.2.1 HMGA2的变化对结直肠癌细胞系迁移、侵袭和EMT的影响
4.2.2 HMGA2的变化对结直肠癌细胞系增殖的影响
4.3 HMGA2促进结肠癌细胞的裸鼠皮下成瘤能力及EMT过程
4.4 HMGA2在对5-FU不敏感的结肠癌组织中表达上调
4.5 在体外,HMGA2促进结肠癌细胞对5-FU的耐受
4.6 在体内,HMGA2促进结肠癌对5-FU的耐受
4.7 HMGA2调控下游基因及信号通路的筛选
4.7.1 应用TCGA数据库分析HMGA2调控的下游基因及信号通路
4.7.2 应用表达谱芯片分析HMGA2调控的下游基因及信号通路
4.8 HMGA2通过转录调控Dvl2促进结直肠癌细胞对5-FU的耐药
4.8.1 HMGA2能够与Dvl2的启动子区域(-201/-185)直接结合,并激活其转录
4.8.2 HMGA2通过Dvl2促进结直肠癌细胞系对5-FU的耐药
4.9 HMGA2活化调控Wnt/β-catenin信号通路
4.10 在临床组织样本中Dvl2的高表达促进结直肠癌对5-FU的耐药
5 讨论
6 结论
参考文献
综述 High mobility group AT-hook 2 and cancer
作者简历及在读期间所取得科研成果
浙江大学;