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一.大鼠皮层神经元机械性损伤模型中p75NTR、Bax、Bcl-2和Caspase-3表达及细胞凋亡的研究;二.1-三氯甲基-1,2,3,4-四氢化-β-咔啉(TaClo)对多巴胺能神经元的毒性作用及机制研究

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第一部分 大鼠神经元机械性损伤模型中p75NTR、Bax、Bcl-2和Caspase-3表达及细胞凋亡的研究

第一节大鼠神经元机械性损伤模型的制备

前 言

材料与方法

结 果

附 图

讨 论

结 论

第二节流式细胞术测定机械性损伤后神经元细胞凋亡

前 言

材料与方法

结 果

讨 论

结论

第三节P75NTR、Bax、Bcl-2和Caspase-3表达及其与凋亡的关系

前 言

材料与方法

结 果

讨论

结 论

参考文献

第二部分 1-三氯甲基-1,2,3,4-四氢化-β-咔啉(TaClo)对多巴胺能神经元的毒性作用及机制研究

前 言

材料与方法

结 果

讨 论

结 论

参考文献

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摘要

第一部分:大鼠皮层神经元机械性损伤模型中p75NTR、Bax、Bcl-2和Caspase-3表达及细胞凋亡的研究 第一节:大鼠神经元体外培养与鉴定、机械性损伤模型的制备及评价 [目的]完善大鼠神经元体外培养方法,制备并评价大鼠神经元体外培养机械性损伤模型。 [方法]取孕17天Sprague Dawley(SD)大鼠皮层脑组织,进行神经元分离、接种及培养。培养24小时后加阿糖胞苷作用48小时,之后换完全培养基培养至第7天神经元成熟,通过倒置相差显微镜观察细胞形态,神经烯醇化酶(NSE)染色,细胞免疫荧光法进行神经元纯度测定。制作机械性损伤模型:神经元上覆盖与培养板孔大小相当的200目钢网,并在钢网上压上不同重量的钢板,低速自动平衡离心机离心,调整离心速度,使其在30秒达到2000r,然后迅速归零,重复2次。根据不同重量钢板加压(3克、6克、9克)依次分为轻、中和重度损伤组,并取不同时间点观察(15分钟、30分钟、1小时、6小时、12小时、24小时、48小时、72小时)。倒置相差显微镜下观察损伤前后神经元细胞形态学变化,行台盼蓝染色,计算细胞存活率,并测量各个时段不同损伤组培养液中乳酸脱氢酶的活性,以评价此模型的合理性和可行性。 [结论]神经元培养纯度达到要求;实验建立的神经元损伤模型操作简便,能较好地模拟脑外伤中细胞损伤过程。 第二节:流式细胞术测定机械性损伤后神经元细胞凋亡 [目的]检测大鼠体外培养神经元机械性损伤后,不同损伤程度、不同时间点神经元的细胞凋亡 [方法]根据不同重量钢板加压(3克、6克、9克)依次分为轻、中和重度损伤组,并取不同时间点分组(2小时、6小时、12小时、24小时、48小时、72小时、96小时)。胰酶消化法收集细胞,Annexin V-FITC/PI双染法进行细胞染色后流式细胞仪上机分析,激发波长为488 nm,每个样本均获取1×105个细胞进行观测,并计算凋亡率。 [结论]流式细胞术作为检测早期细胞凋亡的手段具有较高精确性,损伤模型细胞凋亡进程及趋势较好的模拟了脑损伤后神经元凋亡。 第三节:p75NTR、Bax、Bcl-2和Caspase-3表达及其与凋亡的关系 [目的]研究大鼠神经元机型性损伤后p75NTR、Bax、Bcl-2与Caspase-3表达改变及神经细胞凋亡情况,分别探讨他们在神经元凋亡过程中的作用机制及相互作用方式。 [方法]依据不同损伤程度、不同时间点分组同上,应用特异性抗体细胞免疫法检测各组别间神经元Bax、Bcl-2、Caspase-3蛋白表达的差异。应用Western-blot法检测各组间p75NTR蛋白表达水平的差异;Realtime-PCR技术分析各组间p75NTR mRNA表达差异。结合流式细胞仪检测的细胞凋亡率,应用统计学方法分析两者相关性。 [结论]p75NTR表达、Bax/Bcl-2比值、Caspase-3表达和神经元凋亡密切相关。p75NTR早期表达可能是神经元损伤后细胞凋亡的因素之一,Bax、Bcl-2、Caspase-3的表达可能与这一过程相关。 第二部分:1-三氯甲基-1,2,3,4-四氢化-β-咔啉(TaClo)对多巴胺能神经元的毒性作用及机制研究 [目的]完善大鼠多巴胺能神经元体外培养方法;研究TaClo对体外培养多巴胺能神经元细胞的毒性作用及其机理。 [方法]取孕14天大鼠,干冰处死后,常规消毒开腹,取出胚胎,显微镜下剥离外膜,分离中脑,取其腹侧部分,TryplE消化20分钟后,新生小牛血清终止消化,用1000、200、10微升移液器枪头轻柔吹打后,1000r离心6分钟,弃上清液,加入细胞培养液,细胞计数板计数,按1×105个细胞/孔微岛种植法接种于24孔板内,之后隔天半量换液,继续培养7天至细胞成熟,即为神经元-胶质细胞混合培养。原代神经元培养方法同上,接种24小时后加阿糖胞苷作用48小时,全换液,余者相同。倒置显微镜下观察细胞形态,多巴胺能神经元TH染色计数。第7天细胞换液1ml,各孔加入TaClo,使其终浓度分别为50、100、200、500、1000μM,作用72小时后显微镜下观察细胞形态,细胞TH染色后多巴胺神经元计数、拍照,免疫荧光检测JC-1显示线粒体去极化。原代培养方法同上,以1×106个细胞/孔接种于24孔板内,体外培养7天,待神经元成熟后,实验组分别加入TaClo(终浓度50、200μM),作用1小时、24小时后,刮取细胞,提取蛋白,BCA法测定蛋白浓度后,调整样本浓度。Western-blot法测p38MAPK及Caspase-3蛋白表达。利用统计学软件SYSTAT 10对实验结果进行统计学分析。 [结论]TaClo可以导致多巴胺能神经元凋亡,这一过程是通过线粒体膜电位的去极化,以及活化的p38 MAPK和caspase-3蛋白表达等通路完成的。

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