声明
摘要
图目录
表目录
主要符号表
1 绪论
1.1 植物组织培养玻璃化研究进展
1.1.2玻璃化试管苗的解剖结构及其生理生化变化
1.1.3影响玻璃化发生的因素
1.1.4玻璃化发生机制
1.1.5玻璃化的预防与恢复
1.2植物DNA甲基化研究进展
1.2.1 DNA甲基化的作用机制与基因表达调控
1.2.2 DNA甲基化的检测方法
1.2.3 DNA甲基化在植物应对逆境胁迫中的作用
1.3 乙烯信号转导及其在植物逆境响应中的作用
1.3.1乙烯的生理作用
1.3.2 乙烯的生物合成及其信号转导
1.3.3 乙烯在植物逆境响应中的作用
1.4研究工作主要思路
1.4.1立题依据
1.4.2研究内容
2石竹玻璃化试管苗的显微结构特征及生理生化变化
2.1 引言
2.2实验材料、试剂与仪器
2.2.1 实验材料
2.2.2 实验试剂
2.2.3 实验仪器
2.3实验方法
2.3.1 中国石竹的培养
2.3.2光学显微镜及透射电镜切片样品的制作和观察
2.3.3扫描电镜样品制作和观察
2.3.4叶片水分代谢相关指标测定
2.3.5叶绿索、可溶性蛋白和可溶性糖含量测定
2.3.6抗氧化酶活性检测
2.3.7活性氧含量测定
2.3.8相对电导率测定
2.3.9丙二醛含量测定
2.3.10抗坏血酸和脱氢抗坏血酸含量测定
2.3.11氧化型谷胱甘肽和还原型谷胱甘肽含量测定
2.3.12数据分析
2.4实验结果
2.4.1 玻璃化试管苗的形态特征
2.4.2玻璃化苗茎、叶扫描结构特征
2.4.3玻璃化试管苗细胞显微结构特征
2.4.4玻璃化试管苗叶肉细胞亚显微结构特征
2.4.5玻璃化试管苗气孔运动特征
2.4.6玻璃化试管苗的水分及质外体气体含量变化
2.4.7玻璃化试管苗可溶性糖、可溶性蛋白及叶绿素含量的变化
2.4.8玻璃化试管苗活性氧代谢变化
2.5讨论
2.6本章小结
3 拟南芥玻璃化试管苗的DNA甲基化及转录组变化
3.1 引言
3.2实验材料、试剂与仪器
3.2.1 实验材料
3.2.2实验试剂
3.2.3实验仪器
3.3实验方法
3.3.1拟南芥玻璃化苗的诱导及培养
3.3.2 DNA样品检测与文库构建
3.3.3参考序列比对分析
3.3.4差异甲基化分析
3.3.5 RNA提取及转录组测序
3.3.6甲_基化测序与转录组测序关联分析
3.4实验结果
3.4.1 拟南芥玻璃化苗的诱导及形态观察
3.4.2拟南芥玻璃化苗全基因组甲基化水平及类型变化
3.4.3拟南芥玻璃化苗与正常苗甲基化差异分析
3.4.4拟南芥玻璃化苗转录组测序及分析
3.4.5拟南芥玻璃化苗转录组测序与全基因组甲基化测序联合分析
3.5讨论
3.6本章小结
4 乙烯在拟南芥玻璃化发生中的作用机制
4.1 引言
4.2实验材料、试剂与仪器
4.2.1 实验材料
4.2.2实验试剂
4.2.3 实验仪器
4.3实验方法
4.3.1 拟南芥试管苗的培养
4.3.2激素含量的测定
4.3.3亚硫酸盐测序法
4.3.4实时定量荧光PCR
4.3.5保卫细胞中活性氧含量及气孔开度测定
4.3.6叶片失水速率及组织含水量测定
4.3.7水孔蛋白磷酸化的Western blot鉴定
4.3.8原生质体吸水膨胀实验
4.4实验结果
4.4.1 结冷胶对拟南芥乙烯受体突变体的影响
4.4.2 AgNO3对拟南芥试管苗玻璃化的影响
4.4.4玻璃化苗ACS1和ETR1基因甲基化的变化及AgNO3对其影响
4.4.5玻璃化苗乙烯合成及信号转导相关基因表达的变化及AgNO3对其影响
4.4.6玻璃化苗气孔运动和气孔开度的变化及AgNO3对其影响
4.4.7玻璃化苗水孔蛋白磷酸化的变化及AgNO3对其影响
4.5讨论
4.6本章小结
5 AgNO3控制石竹玻璃化发生的作用及机制
5.1 引言
5.2实验材料、试剂与仪器
5.2.1 实验材料
5.2.2实验试剂
5.2.3实验仪器
5.3实验方法
5.3.1 石竹玻璃化苗诱导及玻璃化恢复
5.3.2乙烯含量测定
5.3.3实时定量荧光PCR
5.3.4保卫细胞中活性氧含量及气孔开度测定
5.3.5叶片失水速率及组织含水量测定
5.4结果与分析
5.4.1 AgNO3对中国石竹玻璃化苗的抑制及恢复作用
5.4.2 AgNO3对中国石竹玻璃化苗乙烯积累及乙烯信号相关基因表达的影响
5.4.3 AgNO3对中国石竹玻璃化苗抗氧化酶的影响
5.4.4 AgNO3对中国石竹玻璃化苗活性氧积累的影响
5.4.5 AgNO3对中国石竹玻璃化苗保卫细胞中活性氧和气孔开度的影响
5.4.6 AgNO3对中国石竹玻璃化苗失水率和含水量的影响
5.5 讨论
5.6本章小结
6结论、创新点与展望
6.1 结论
6.2创新点
6.3 展望
参考文献
附录
作者简介
攻读博士学位期间科研项目及科研成果
致谢